banner
Дом / Новости / Выживаемость лишайника Xanthoria parietina в моделируемых марсианских условиях окружающей среды
Новости

Выживаемость лишайника Xanthoria parietina в моделируемых марсианских условиях окружающей среды

Jun 14, 2023Jun 14, 2023

Научные отчеты, том 13, Номер статьи: 4893 (2023) Цитировать эту статью

1246 Доступов

12 Альтметрика

Подробности о метриках

Xanthoria parietina (L.) Th. о. широко распространенный листоватый лишайник, обладающий высокой устойчивостью к УФ-излучению благодаря париетину, вторичному веществу лишайника. Мы подвергли образцы X. parietina воздействию марсианских условий в течение 30 дней, чтобы изучить их выживаемость. Жизнеспособность лишайника контролировали с помощью флуоресценции хлорофилла, которая указывает на активную световую реакцию фотосинтеза, проводя анализы in situ и после обработки. Рамановская спектроскопия и ПЭМ использовались для оценки сохранности каротиноидов и возможных изменений в ультраструктуре фотобионта соответственно. Наблюдались значительные различия в фотоэффективности между образцами, облученными УФ-излучением, и образцами, выдержанными в темноте. Значения флуоресценции коррелировали с циклами дня и ночи температуры и влажности. Восстановление фотоэффективности показало, что УФ-облучение оказывает значительное влияние на фотосинтетическую световую реакцию. Рамановская спектроскопия показала, что сигнал каротиноидов в образцах, подвергшихся УФ-облучению, значительно уменьшился после воздействия. Наблюдения с помощью ПЭМ подтвердили, что образцы, подвергшиеся воздействию УФ-излучения, больше всего пострадали от обработки, демонстрируя дезорганизацию хлоропластид в клетках фотобионтов. В целом, X. parietina смогла выжить в смоделированных условиях Марса, и по этой причине ее можно рассматривать как кандидата для длительного космического воздействия и оценки фоторазлагаемости париетина.

Двумя горячими астробиологическими темами, предложенными Европейской дорожной картой астробиологии (проект AstRoMap), являются изучение пределов жизни в смоделированных/реальных экстремальных условиях и изучение конкретных биомолекул, которые могут представлять собой биомаркеры нынешних/прошлых форм жизни за пределами Земли. биосфера1. Исследование пределов жизни в стрессовых условиях позволяет изучить физиологические и биохимические эффекты экстремальных условий на биологические образцы2. За последние тридцать лет биологи осознали, что очень экстремальные и негостеприимные места обитания могут поддерживать жизнь3. Изучение экстремофилов, способных выживать в критических условиях, и видов-первопроходцев, первыми колонизирующих окружающую среду, имело решающее значение в развитии астробиологии4,5. Среди них доказано, что лишайники процветают и выживают в самых экстремальных средах обитания на Земле3,6,7,8,9,10. Таким образом, экофизиология этих организмов может дать представление об их потенциальной адаптивной пластичности с точки зрения изменения климата, прошлых (и будущих) земных геологических сценариев11 и внеземных сред обитания, таких как поверхность Марса и экзопланеты.

Несколько исследований доказали устойчивость лишайников к воздействию космоса и условий Марса. Высокая устойчивость лишайников к экстремальным условиям обусловлена ​​их основными эколого-физиологическими особенностями (пойкилогидрия и ангидробиоз) и обменными процессами (продукция вторичных лишайниковых веществ). Эксперимент БИОПАН показал, что Rusavskia elegans (Link) SY Kondr. и Карнефельт (2003), Rhizocarpon geographicum (L.) DC. шир. и Circinaria fruticulosa (Eversm.) Sohrabi (2012) выживали в космосе в течение 10–14 дней, будучи метаболически активными и способными расти после воздействия8,12,13,14,15,16,17. Целью эксперимента LIFE было выдерживание в космосе различных биологических образцов в течение 1,5 лет. Rusavskia elegans продемонстрировала более высокое восстановление показателей эффективности фотосинтеза после полета по сравнению с другими протестированными видами18.

С другой стороны, наземные эксперименты позволяют моделировать экстремальные условия и контролировать параметры жизнеспособности организмов на месте или сразу после обработки3,6. Pleopsidium chromophanum (Wahlenb.) Zopf был протестирован в условиях марсианской ниши в Центре моделирования Марса Немецкого аэрокосмического центра (DLR Berlin, Германия)20. Результаты подтвердили способность лишайника физиологически адаптироваться и увеличивать фотосинтез в течение 34 дней пребывания в условиях марсианской ниши. Вместо этого C. fruticulosa подвергалась физиологической активности как в нише Марса, так и в условиях, подобных поверхности, в течение 30 дней в Центре моделирования Марса19, и только образцы из ниш показали жизнеспособность. Чтобы исследовать опасное воздействие ионизирующего излучения на лишайники, высушенные слоевища R. elegans были облучены в Национальном институте радиологических наук (NIRS) в Тибе, Япония21. Результаты выявили значительное снижение фотоэффективности, но не коррелирующее с применяемыми увеличивающимися дозами, что свидетельствует о высокой выживаемости ангидробиотических слоевищ.

 20). Class 2 spectra have a medium/low SNR with the 1000 cm−1 peak fading (5 < SNR < 20). Class 3 spectra are classified by null/non-detectable peaks (SNR < 5)47. The peaks’ features of FM samples spectra and DM samples spectra—the height or amplitude (Amp), the width at half height (w) and the peak position on the wavenumber (x)—were retrieved from the class 1 spectra (SNR > 20) by fitting the resulting averaged spectrum by using a Lorentz function46. Lorentzian fit was performed on the Project FIVE 5.0 software (WITec Suite FIVE)./p> 20 spectra (see "Raman spectroscopy" paragraph). Specific dataset consisting of the before/after feature's values were separated by treatment. Each dataset was analyzed with one-way ANOVA to verify eventual significant difference between before and after the exposure features’ values. Welch Two Sample t-test was performed on the datasets too for one-way ANOVA proofing. The non-parametric Kruskal–Wallis test was performed—instead of ANOVA—when carotenoids peaks’ feature values were not distributed normally./p> 20 (see "Materials and Methods" section). A non-parametric Kruskal–Wallis test was performed for all the FM carotenoids peaks’ position values (x) and for the DM 1515 cm−1 position values (x) because data were not normally distributed. The average carotenoid peaks’ features (Amp, w and x)—before and after the exposure—are reported in Tables S6 and S7. Figure S3 shows the 1000 cm−1 peak's features compared before/after the exposure for both the treatments FM (on the left) and DM (on the right). In FM samples, Amp, w and x differences were significant (p < 0.001, Tables S8 and S9). In DM samples, w and x differences were both significant (p < 0.001, Tables S8 and S9), but Amp difference was not (Table S8). Fig. S4 shows the 1150 cm−1 peak's features (Amp, w and x) compared before/after the exposure for both the treatments FM (on the left) and DM (on the right). In FM samples, Amp and x differences were significant (p < 0.001, Table S8 and Table S9), but w difference was not highly significant (p < 0.05, Table S8). In DM samples, Amp (p < 0.1), w (p < 0.05) and x (p < 0.05) differences were not highly significant (Tables S8 and S9). Fig. S5 shows the 1515 cm−1 peak features (Amp, w and x) compared before/after the exposure for both the treatments FM and DM. In FM samples, Amp, w and x differences were significant (p < 0.001, Tables S8 and S9). In DM samples, Amp difference was not highly significant (p < 0.1, Table S8), w difference was significant (p < 0.001, Table S8) and x difference was not significant (Table S9)./p>